ورود
مقالات فارسیISIکنفرانسهاژورنالها

بهینه سازی کالوس زایی و باززایی گیاه خیار (Cucumis Sativus L.) با استفاده از ریزنمونه های کوتیلدون، هیپوکوتیل و برگ

محل انتشار: فصلنامه بیوتکنولوژی کشاورزی، دوره: 10، شماره: 2
سال انتشار: 1397
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: فارسی
مشاهده: 382

فایل این مقاله در 17 صفحه با فرمت PDF قابل دریافت می باشد

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این مقاله:
https://civilica.com/doc/864828

شناسه ملی سند علمی:

JR_JOAGK-10-2_005

تاریخ نمایه سازی: 20 خرداد 1398

چکیده مقاله:

رقم سوپرنیا خیار یکی از ارقام مهم هیبرید وارداتی با عملکرد  بالا می­باشد. به منظور بهینه کردن تکثیر غیرجنسی این رقم از طریق کشت درون شیشه ای، ریزنمونه­های مختلف کوتیلدون، هیپوکوتیل و برگ در محیط پایه موراشیگ و اسکوگ MS)) تحت اثر غلظت های صفر، 1/0، 2/0، 3/0 و 4/0 میلی گرم در لیتر هورمون 1- نفتالن استیک اسید (NAA) در ترکیب با غلظت های 1، 2، 3 و 4 میلی گرم در لیتر هورمون 6- بنزیل آمینوپورین (BAP) قرار گرفت. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی در سه تکرار و تعداد پنج ریزنمونه در هر تکرار انجام گردید. درصد کالوس­زایی، درصد کالوس­های رویان­زا و فراوانی تولید نوساقه در ریزنمونه­های کشت شده مورد ارزیابی قرار گرفت. بیشترین میزان کالوس­زایی (6/86 درصد) در ریزنمونه کوتیلدون در تیمار هورمونی 3/0 میلی گرم در لیتر NAA به همراه 3 میلی گرم در لیتر BAP، بیشترین درصد کالوس­های رویان­زا (6/61 درصد) در ریزنمونه هیپوکوتیل در تیمار هورمونی 2/0 میلی گرم در لیترNAA  به همراه 2 میلی گرم در لیتر BAP و بیشترین تعداد نوساقه (08/20) در ریزنمونه کوتیلدون در تیمار هورمونی 3/0 میلی گرم در لیتر NAA به همراه 3 میلی گرم در لیتر BAP مشاهده گردید. نوساقه­های باززا شده جهت القا و تشکیل ریشه­ به محیط MS ½ حاوی 1 میلی گرم در لیتر هورمون NAA منتقل و سپس گیاهچه­های رشدیافته به محیط خارج آزمایشگاه سازگار گردیدند. بر اساس نتایج این مطالعه، استفاده از ریزنمونه کوتیلدون جهت ریزازدیادی و باززایی این ژنوتیپ به­خصوص در مطالعات انتقال ژن توصیه می­گردد.

کلیدواژه ها:

ریزازدیادی ، کشت درون شیشه ای ، خیار ، NAA ، BAP

نویسندگان

مریم عبدلی نسب

استادیار گروه بیوتکنولوژی، پژوهشکده علوم محیطی، پژوهشگاه علوم، تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته کرمان. کرمان، ایران.

مراجع و منابع این مقاله:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این مقاله را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود مقاله لینک شده اند :
  • Ahmad N, Anis M (2005). In Vitro Mass Propagation of ...
  • from Nodal Segments.  Turkish Journal of Botany 29: 237-240. ...
  • Ahsan AK, Arshad NA, Azhar M, Wan MWY, Che RBC ...
  • Alsop WR, Cure WW, Evans GF, Mott RL (1978). Preliminary ...
  • Amini F, Ganbarzade Z, Askary Mehrabadi M (2013). Optimization of ...
  • Bu-Romman S, Suwwan M, Al-Ramamneh EAD (2013). The influence of ...
  • Burza W, Malepszy S, Rostek E (1995). An effect of ...
  • Custers JBM, Verstappen ECP (1989). Improvement of in vitro growth ...
  • Davies PJ (1995). The plant hormone concept: Concentration, sensitivity and ...
  • Gambley RL, Dodd WA (1990). An in vitro technique for ...
  • Gambley RL, Dodd WA (1991). The influence of cotyledon in ...
  • Hajibabaei R, Motalebi-Azar A, Alizadeh S, Zare-Nehbandi F (2010). Effect ...
  • Halder T, Gadgil VN (1982). Morphogenesis in some species of ...
  • Hassanpour A (1996). Comparison of in vitro cultured seedling and ...
  • Hooker MP, Nabors MW (1977). Callus initiation, growth and organogenesis in ...
  • Javadian N, Sharifi M, Moieni A (2016). In vitro Regeneration ...
  • Jesmin R, Mian MAK (2016). Callus induction and efficient plant ...
  • Jeyakumar JJ, Kamaraj M (2015). Direct organogenesis of hypocotyl explants ...
  • Kathal R, Bhatnagar SP, Bhojwani SS (1988). Regeneration of plants ...
  • Kim SG, Chang JR, Cha H, Woonglee K (2011). Callus ...
  • Khoshbakht K (1995). Investigating the effect of growth regulators on ...
  • Kumar HGA, Murthy HN, Paek KY (2003). Embryogenesis and plant ...
  • Ladyzynski M, Korzeniewska A, Malepszy S (2001). Recurrent regeneration through ...
  • Lange NE, Juvik JA (1986). Age dependence for organogenesis of ...
  • Lebeda A (2007). Cucurbits, Capter 8. In: Singh. [ed], Genetics’ ...
  • Lou H, Kako S (1994). Somatic embryogenesis and plant regeneration ...
  • Lv J, Qi J, Shi Q. et al. 2012. Genetic ...
  • Milnear JA (2000). Functional foods: US perspective. The American Journal ...
  • Mishra AK, Bhatnagar SP (1995). Direct shoot regeneration from the ...
  • Motamedi J, Zebarjadi AR, Kahrizi D, Hatef Salmanian A, Soheilikhah ...
  • Murashige T, Skoog F (1962). A revised medium for rapid ...
  • Murphy DJ (2003). Agricultural biotechnology and oil crops current uncertainties ...
  • Neibaur I, Gallo M, Altpeter F (2008). The effect of ...
  • Nishibayashi S, Kaneko H, Hayakawa T (1996). Transformation of cucumber ...
  • Norouzi E, Naseri L, Najafzadeh R (2018). Effects of various ...
  • Otroshy M, Mokhtari A (2014). Rapid micropropagation of Cucumis sativus ...
  • Ozgen M, Turet M, Altinok S, Sancak C (1998). Efficient ...
  • Radhakrishnan R, Ranjithakumari BD (2007). Callus induction and plant regeneration ...
  • Raharjo SHT, Hernandez MO, Zhang YY, Punja ZK (1996). Transformation ...
  • Rajagopalan PA, Perl-Treves R (2005). Improved cucumber transformation by a ...
  • Seo SH, Bai DG, Park HY (2000). High frequency shoot ...
  • Shrivastava A, Roy S (2012). Callus multiplication of a medicinally ...
  • Singh MN, Kathal R, Bhatnagar SP (1990). Regeneration of plants ...
  • Stripichitt P, Nawata E (1987). In vitro shoot forming capacity of cotyledon ...
  • Ugandhar T, Venkateshwarrlu M, Begum G, Srilatha T, Jaganmohanreddy K ...
  • Usman M, Hussain Z, Fatima B (2011). Somatic embryogenesis and ...
  • Wehner TC, Locy RD (1981). In vitro adventitious shoot and root formation of ...
    • نمایش کامل مراجع